Halstead SB. Dengue. Lancette. 2007; 370 (9599): 1644–52.
Google Scholar
Guzman MG, Gubler DJ, Izquierdo A, Martinez E, Halstead SB. Infection de la dengue. Nat Rev Ten Primers. 2016; 2: 16055.
Google Scholar
Wasserman S, Tambyah PA, Lim PL. Cas de fièvre jaune en Asie: amorcé pour une épidémie. Int J Infecte Dis. 2016; 48: 98–103.
Google Scholar
Musso D, Gubler DJ. Virus Zika. Clin Microbiol Rev. 2016; 29 (3): 487–524.
Google Scholar
Misra UK, Kalita J. Présentation: encéphalite japonaise. Prog neurobiol. 2010; 91 (2): 108–20.
Google Scholar
Mukhopadhyay S, Kuhn RJ, Rossmann MG. Une perspective structurelle du cycle de vie du flavivirus. Nat Rev Microbiol. 2005; 3 (1): 13–22.
Google Scholar
Roy SK, Bhattacharjee S. Virus dengue: épidémiologie, biologie et étiologie de la maladie. Peut j microbiol. 2021; 67 (10): 687–702.
Google Scholar
Actualités d’épidémie de maladies. Dengue – situation mondiale. Organisation Mondiale de la Santé. 2023. https://www.who.int/emergency/Distease Offbreak-news/item/2024-Don518. Consulté le 20 novembre 2024.
Saiz JC, Martín-Acebes MA, Bueno-Marí R, et al. Virus Zika: Qu’avons-nous appris depuis le début de la récente épidémie? Microbiol avant. 2017; 8: 1554.
Google Scholar
Al Awaidy St, Khamis F, Al-Zakwani I, et al. Caractéristiques épidémiologiques et cliniques des patients atteints de la dengue dans une récente épidémie à Oman: une étude de cohorte rétrospective du centre unique. Oman Med J. 2022; 37 (6): E452.
Google Scholar
Kostyuchenko VA, Lim Ex, Zhang S, et al. Structure du virus Zika thermiquement stable. Nature. 2016; 533 (7603): 425–8.
Google Scholar
Fukuta M, Mao ZQ, Morita K, Moi ML. Stabilité et infectivité du SRAS-COV-2 et de l’ARN viral dans l’eau, les boissons commerciales et les fluides corporels. Microbiol avant. 2021; 12: 667956.
Google Scholar
Riddell S, Goldie S, Hill A, Eagles D, Drew TW. L’effet de la température sur la persistance du SARS-COV-2 sur les surfaces communes. Virol J. 2020; 17 (1): 145.
Google Scholar
Haga K, Chen Zn, Himeno M, Majima R, Moi ML. Utilité d’un test de micro-neutralisation in vitro par rapport à un test de neutralisation de réduction de la plaque pour le virus de la dengue, le virus de l’encéphalite japonais et la sérologie du virus Zika et le dépistage des médicaments. Pathogènes. 2023; 13 (1): 8.
Google Scholar
Azami Nam, Moi ML, Ami Y, et al. Immunogénicité dépendante du génotype du virus de la dengue de type 2 Asie et génotypes asiatiques / américains dans le ouiset commun (Callithrix jacchus): Divergence dans les niveaux d’anticorps neutralisants et d’infection entre les génotypes. Micro-organismes. 2021; 9 (11): 2196.
Google Scholar
[ PubMed ]Mao ZQ, Minakawa N, Moi ML. Nouvelle efficacité antivirale de Hedyotis répandu et Artemisia capillaris Extraits contre le virus de la dengue, le virus de l’encéphalite japonais et l’infection par le virus Zika et les signatures de cytokines immunorégulatrices. Plantes (Bâle). 2022; 11 (19): 2589.
Google Scholar
Ito M, Takasaki T, Yamada K, et al. Développement et évaluation des tests de PCR de transcriptase inverse Taqman fluorogène pour la détection des types de virus de la dengue 1 à 4. J Clin Microbiol. 2004; 42 (12): 5935–7.
Google Scholar
Bae HG, Nitsche A, Teichmann A, Biel SS, Niedrig M. Détection du virus de la fièvre jaune: une comparaison de la PCR quantitative en temps réel et du test de plaque. J Virol Méthodes. 2003; 110 (2): 185–91.
Google Scholar
Wang C, Liu H. Facteurs influençant la cinétique de dégradation des ARNm et les demi-vies des microARN, les CIRNc, les ARNnc dans le sang in vitro en utilisant une PCR quantitative. Sci Rep. 2022; 12 (1): 7259.
Google Scholar
Tsai YL, Tran B, Palmer CJ. Analyse de la persistance de l’ARN viral dans l’eau de mer par transcriptase inverse-PCR. Appl Environ Microbiol. 1995; 61 (1): 363–6.
Google Scholar
Lensink MJ, Li Y, Lequime S. Flavivirus aquatiques. J Virol. 2022; 96 (17): E0043922.
Google Scholar
Fujii M, Ito I, Matsuo I. Un cas de pneumonie causé par la commune de Schizophyllum et la co-infection avec le virus de l’encéphalite japonais dans un sceau: isolement et caractérisation du virus de l’encéphalite japonais (en japonais). Proc JPN Soc Vet Sci. 2021; 11: 215.
Google Scholar
Becskei A, Rahaman S. La vie et la mort de l’ARN à travers les températures. Comput Struct Biotechnol J. 2022; 20: 4325–36.
Google Scholar
Fukuta M, Nguyen CT, Nguyen TTT, et al. Divergences de l’infectivité des échantillons cliniques du flavivirus et du SARS-COV-2: un dosage amélioré de la perte de virus infectieuse et de l’évaluation de la virémie. Int J Environ Res Santé publique. 2021; 18 (18): 9845.
Google Scholar
Pinon A, Vialette M. Survival des virus dans l’eau. Intervirologie. 2018; 61 (5): 214–22.
Google Scholar
Du S, Liu Y, Liu J, et al. Les moustiques Aedes acquièrent et transmettent le virus Zika en se reproduisant dans des environnements aquatiques contaminés. Nat Commun. 2019; 10 (1): 1324.
Google Scholar
Knight ca. La stabilité du virus de la grippe en présence de sels. J Exp Med. 1944; 79 (3): 285–90.
Google Scholar
Schaub A, Luo B, David SC, et al. La sursaturation du sel comme accélérateur de l’inactivation du virus de la grippe A dans des gouttelettes de 1 μl. Environ Sci Technol. 2024; 58 (42): 18856–69.
Google Scholar
Japan Water Works Association. Approvisionnement en eau au Japon 2017. 2017. http://www.jwwa.jp/jigyou/kaigai_file/2017watersupplyinjapan.pdf. Consulté le 20 novembre 2024.
Hori M, Shozugawa K, Sugimori K, Watanabe Y. Une étude de la surveillance de la dureté de l’eau du robinet au Japon et ses modèles de distribution. Sci Rep. 2021; 11 (1): 13546.
Google Scholar
Ibrahim Eme, El-Liethy MA, Abia Alk, Hemdan BA, Shaheen MN. Survie de E. coli O157: H7, Salmonelle typhimuriumHADV2 et MNV-1 dans l’eau de la rivière dans des conditions sombres et variant les températures de stockage. Sci Total Environ. 2019; 648: 1297–304.
Google Scholar
Ji K, Chen X, Aldahan A, Yi P, Murad A, Hussein S, Alshamsi D, Ahmed MM, Zhongbo Yu. Chronologie et caractéristiques des eaux souterraines le long de la région aride des Émirats arabes-unie-homan: guide pour la durabilité régionale. J Radioanal Nucl Chem. 2020; 323 (3): 1055–70.
Allwood PB, Malik YS, Hedberg CW, Goyal SM. Survie du coliphage d’ARN spécifique en F, du calicivirus félin, et Escherichia coli Dans l’eau: une étude comparative. Appl Environ Microbiol. 2003; 69 (9): 5707–10.
Google Scholar
Zimler Ra, Alto BW. Transmission verticale du virus Zika par la Floride Caissier aegypti et Ae. albopictus. Insectes. 2023; 14 (3): 289.
Google Scholar
Fontaine A, Jiolle D, Moltini-Conclois I, Lequime S, Lambrechts L. Excrétion de l’ARN du virus de la dengue par Caissier aegypti Permet une surveillance non destructive de la dissémination virale dans les moustiques individuels. Sci Rep. 2016; 6: 24885.
Google Scholar
Hamel R, Narpon Q, Serrato-Pomar I, et al. Le virus du Nil occidental peut être transmis dans les populations de moustiques par des excréments de moustiques infectieux. iscience. 2024; 27 (11): 111099.
Google Scholar
Bara JJ, Clark TM, Remold SK. Sensibilité des larves Caissier aegypti et Caissier albopictus (Diptera: Culicidae) au virus de la dengue. J Med Entomol. 2013; 50 (1): 179–84.
Google Scholar
De Husman AM, Bartram J. Chapitre 7 Supproduction mondiale en eau potable en sécurité. Perspectez la virol MED. 2007; 17: 127–62.
Google Scholar
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